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        細胞學堂 | 超全解析!神經干細胞培養及誘導分化必看

        更新時間:2025-02-14  |  點擊率:2882


        神經干細胞(NSCs)因具備獨-特的增殖能力與多向分化潛能,在神經科學研究中發揮著重要作用。然而,在培養神經干細胞的過程中,科研人員常常會遇到培養要求高、分化控制難等挑戰。


        那么,如何選擇合適的培養方式?不同培養條件對細胞狀態有何影響?本文將深入介紹和解析神經干細胞的培養方法、誘導分化策略,并為您解答常見實驗難題,助力您的研究更進一步!





        01

        神經干細胞的基本介紹

        神經干細胞可以從不同的組織中分離獲得,常見的來源有胚胎、大腦皮層、海馬體和脊髓等。為了在體外成功培養神經干細胞,合適的培養體系至關重要,培養基的成分、添加劑的使用、培養條件等因素都對神經干細胞的增殖、存活以及分化狀態有著深遠的影響。

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        生長培養基

        常用配方:DMEM/F12 + B-27(不含維生素A)+ bFGF + EGF + 雙抗

        為更好地滿足神經干細胞的培養需求,普諾賽®提供經過配方優化的神經干細胞完-全培養基,助力您的神經干細胞培養工作更加高效、穩定。

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        培養條件

        氣相:空氣,95%;CO2,5%

        溫度:37℃





        02

        神經干細胞的培養方法

        神經干細胞的培養方法主要分為懸浮培養和貼壁培養兩大類,這兩種方法各具特色,適用于不同的研究需求。

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        懸浮培養

        通過使用未經TC(Tissue Culture)處理、未包被或低吸附的培養器皿和無血清培養基進行培養,自然形成神經干細胞球。

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        貼壁培養

        通過將神經干細胞球消化分散成單個細胞后,接種在經TC處理和包被的培養器皿內,用無血清培養基進行培養,形成貼壁生長的單層細胞。


        懸浮培養和貼壁培養優缺點


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        懸浮培養

        優點

        缺點

        可以形成穩定的神經球,保持未分化狀態,有利于長期培養和大規模擴增

        易形成大細胞球,中心細胞易缺氧、缺營養死亡

        懸浮培養早期增殖速率優于貼壁培養

        懸浮培養自噬體形成增多,可能因為神經球內細胞營養缺乏而激活自噬

        培養條件和方法簡單,分離培養成功率高,離心或半量換液操作簡單

        需要頻繁離心和重懸細胞,增加細胞損失

        干性維持能力更強,相比貼壁培養不易分化

        不利于誘導分化和分化形態觀察

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        貼壁培養

        優點

        缺點

        能形成形態規則的單層細胞,傳代損耗低,容易觀察到細胞形態和分化階段,更有助于神經干細胞的培養和存儲

        長期培養易自發分化

        貼壁培養的單層NSCs,與培養基接觸面更大,誘導分化成功率更高

        貼壁培養的NSCs經多次傳代培養后仍可保持較強的增殖能力,同時具有多分化潛能的特性

        NSCs貼壁不牢,易脫落,需使用TC處理和包被的培養器皿;細胞傳代操作復雜,傳代后易再次懸浮成球

        貼壁培養的NSCs自噬水平較低,有利于維持細胞的穩定性和增殖能力







        03

        神經干細胞的誘導分化

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        1)誘導分化為星形膠質細胞

        將神經干細胞球體消化分散后離心,使用星形膠質細胞誘導培養基(DMEM高糖+B-27,含維生素A+N-2+GlutaMAX+FBS+bFGF[1])重懸細胞,鋪入多聚賴氨酸包被的培養瓶內培養。隨著誘導分化的進行,神經干細胞逐漸轉變為星形膠質細胞,其形態變化如圖1所示。

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        圖1. 神經干細胞誘導分化為星形膠質細胞的形態變化

        2)誘導分化為少突膠質細胞

        與星形膠質細胞誘導方法類似,使用少突膠質細胞誘導培養基(DMEM/F12+B-27,含維生素A+EGF+bFGF+T3+胰島素[2])誘導神經干細胞分化為少突膠質細胞,其形態變化如圖2所示。

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        圖2. 神經干細胞誘導分化為少突膠質細胞的形態變化

        3)誘導分化為神經元細胞

        將神經干細胞球體消化分散后離心,使用神經元細胞誘導培養基(Neurobasal神經元培養基+1% N-2+2% B-27含維生素A+NEAA+β巰基乙醇+L-谷氨酰胺)重懸細胞,鋪入多聚賴氨酸包被的培養瓶內培養。培養6天后,在神經元細胞誘導培養基中加入10 ng/mL GDNF和10 ng/mL BDNF,以進一步促進神經元的分化[3]






        04

        神經干細胞培養常見問題解答

        1)

        如何準確判斷神經干細胞的傳代時機?

        神經干細胞傳代時機需根據神經干細胞球的大小和形態判斷。應讓神經干細胞球中間保持明亮,避免細胞球生長過大。如圖3所示,右下角神經干細胞球體過大,球中部發暗,應該在這種狀態出現之前進行傳代。一般而言,神經干細胞進行1:2傳代后,大約2-3天可再次傳代。

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        圖3. 神經干細胞球生長形態

        2)

        神經干細胞較難消化成單個細胞,是否必須完-全消化?

        在懸浮培養神經干細胞時,無需將神經干細胞球徹-底消化至單個細胞狀態。而貼壁培養神經干細胞時,需將其消化分散成單個細胞,這樣更利于細胞的貼壁生長(如圖4)。在此過程中,推薦使用Accutase酶,相較于常用的胰酶,Accutase酶消化作用更為溫和,能夠顯著降低對細胞的損傷風險。

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        圖4. 使用Accutase酶消化成單細胞接種圖

        3)

        懸浮培養神經干細胞,如何進行換液?

        建議采用半量換液法進行操作,具體操作步驟如下:將培養瓶豎直靜置,待大部分細胞自然沉降后,吸棄原培養體積一半的細胞培養上清液,補加等體積新鮮培養基繼續培養。為減少細胞損失,可將培養上清轉移至離心管中,使用離心機500 rpm離心5 min后,棄去上清,用等體積新鮮培養基重懸細胞,放回原瓶繼續培養。





        無論是懸浮培養還是貼壁培養,都各有優缺點,科研人員可根據實驗需求選擇合適的方法。此外,掌握正確的誘導分化策略和優化培養條件,能夠有效提升神經干細胞的培養成功率。

        希望本篇指南能為您的實驗提供實用參考,如有更多疑問,歡迎留言交流!更多細胞培養干貨,請持續關注細胞學堂專欄~




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        參考文獻

        [1] 

        Sardar D, Lozzi B, Woo J, et al. Mapping Astrocyte Transcriptional Signatures in Response to Neuroactive Compounds[J]. International Journal of Molecular Sciences. 2021;22(8):3975.

        [2]

        楊慧敏. 新生大鼠神經干細胞定向分化為少突膠質細胞的實驗研究[D]. 重慶醫科大學, 2006. 

        [3]

        李登賀. 神經干細胞定向分化為中間神經元的研究[D]. 昆明理工大學, 2016.




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